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天根全血dna提取試劑盒說明書

 更新時間:2023-06-16 點擊量:3504

天根全血dna提取試劑盒簡介:

本試劑盒采用可以特異性結(jié)合DNA的離心吸附柱和dute的緩沖液系統(tǒng),提取血液中的基因組DNA。離心吸附柱中采用的硅基質(zhì)材料為本公司新型材料,高效、專一吸附DNA,可有效去除雜質(zhì)蛋白及細胞中其他有機化合物。提取的基因組DNA片段大,純度高,質(zhì)量穩(wěn)定可靠。

使用本試劑盒純化的DNA適用于酶切、PCR、文庫構(gòu)建、Southern雜交等各種常規(guī)實驗,和芯片雜交、高通量測序等高質(zhì)量DNA需求的實驗。

天根全血dna提取試劑盒特點:

1.樣本適用廣泛:可從抗凝血(EDTA,肝素等)、白膜層和血凝塊等樣品中直接提取基因組DNA。

2.高質(zhì)量:dute的裂解緩沖體系,純化的DNA具有高濃度,高純度,完整性好等特點,滿足芯片雜交,高通量測序等實驗需求。

3.快速低毒:采用硅膠膜吸附原理,無需酚氯仿,1h內(nèi)即可完成實驗。

天根全血dna提取試劑盒操作步驟:

1.處理血液樣品(本產(chǎn)品適用于處理100μl-1ml血液樣品):

a.提取200μl血液樣品時,可直接進行下一步實驗。

b.提取小于200μl血液樣品時,可加緩沖液GS補足體積至200μl,再進行下一步實驗。注意:步驟a和b適用于大多數(shù)100-200μl血液樣品的提取,但有些血液樣品由于蛋白,糖類,脂類含量較多或樣本儲存條件不佳會導(dǎo)致OD260/0D230比值偏低,如需提高OD260/0D230比值可在樣品中加入1-2.5倍血液樣品體積的細胞裂解液CL進行處理,具體步驟同c。

c.提取大于200μ血液樣品時,需細胞裂解液CL處理,具體步驟如下:在樣品中加入

1-2.5倍血液樣品體積的細胞裂解液CL,顛倒混勻,10,000 rpm(~11,500×g )離心1

min,吸去上清,留下細胞核沉淀(如果裂解不chedi,可加入1-2.5倍血液樣品體積的細胞裂解液CL重復(fù)裂解一次),向細胞核沉淀中加200μl緩沖液GS,振蕩至chedi混勻,再進行下一步實驗。

d.當處理血樣為禽類、鳥類、兩棲類或更低級生物的抗凝血液,紅細胞有核細胞,因此處理量為5-20μl,加緩沖液GS補足200μl,再進行下一步實驗。

e.當處理血樣為血凝塊,可選擇液化柱CX1(TIANGEN,RK165)(需自備)對血凝塊進行液化處理,具體步驟如下:

e1.取血凝塊至液化柱CX1中,12,000 rpm(~11,500×g)離心1 min,收集濾液(若血凝塊量大可分批多次過柱離心,收集濾液)。

e2.取100μl-1 ml濾液加入1-2.5倍血液樣品體積的細胞裂解液CL,顛倒混勻,10,000rpm(~11,500×g)離心1min,吸去上清,留下細胞核沉淀(如果裂解不chedi,可加入1-2.5倍血液樣品體積的細胞裂解液CL重復(fù)裂解一次),向收集到的細胞核沉淀中加200μl緩沖液GS,振蕩至chedi混勻,再進行下一步實驗。

注意:如果需要去除RNA,可加入4 μl RNase A(100 mg/ml)溶液(TIANGEN,RT405-12)(需自備)至上述處理獲得的200μl樣品中,振蕩15 sec,室溫放置5min。

2.加入200μl緩沖液GB和20μl Proteinase K的預(yù)混溶液至上述處理獲得的200μl樣品中,充分顛倒混勻,56℃放置10 min,其間顛倒混勻數(shù)次,溶液應(yīng)變清亮(如溶液未chedi變清亮,請延長裂解時間至溶液清亮為止)。

注意:加入緩沖液GB時可能會產(chǎn)生白色沉淀,一般37℃放置時會消失,不會影響后續(xù)實驗。如溶液未變清亮,說明細胞裂解不chedi,可能導(dǎo)致提取DNA量少和提取出的DNA不純。當血液體積≥200μl且沒有采用紅細胞裂解處理,或是樣本儲存條件不佳,水浴后顏色可能為深褐色,注意溶液中沒有團塊等沉淀。

注意:如果血液樣品經(jīng)過細胞裂解液CL處理,大多數(shù)情況下加入緩沖液GB充分顛倒混勻后,室溫放置5 min(其間顛倒混勻1-2次)即可得到高質(zhì)量基因組DNA。

3.室溫放置2-5 min后加入350μl緩沖液BD,充分顛倒混勻,此時可能會出現(xiàn)絮狀沉淀。

4.將上一步所得溶液和絮狀沉淀都加入一個吸附柱CG2中(吸附柱CG2放入收集管中),12,000 rpm(~13,400×g)離心30 sec,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱CG2放入收集管中。

5.向吸附柱CG2中加入500μl緩沖液GDB,12,000 rpm(~13,400×g )離心30 sec,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱CG2放入收集管中。

6.向吸附柱CG2中加入600 μl漂洗液PWB(使用前請先檢查是否已加入無水乙醇),12,000 rpm(~13,400×g)離心30 sec,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱CG2放入收集管中。

7.重復(fù)操作步驟6。

注意:如果血樣經(jīng)過細胞裂解液CL處理,可省略步驟7。

8. 12,000 rpm(~13,400×g)離心2 min,倒掉廢液。將吸附柱CG2置于室溫放置2 min,以chedi晾干吸附材料中殘余的漂洗液。

注意:這一步的目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除,漂洗液中乙醇的殘留會影響后續(xù)的酶反應(yīng)(酶切、PCR等)實驗。

注意:這一步的目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除,漂洗液中乙醇的殘留會影響后續(xù)的酶反應(yīng)(酶切、PCR等)實驗。

9.將吸附柱CG2轉(zhuǎn)入1.5 ml離心管中,向吸附膜中間位置懸空滴加50-200 μl洗脫緩沖液TB,室溫放置2 min,12,000 rpm(~13,400×g)離心2min,將溶液收集到離心管中。注意:洗脫緩沖液體積不應(yīng)少于50l,體積過小影響回收效率。為增加基因組DNA的得率,可將離心得到的溶液再加入吸附柱CG2中,室溫放置2 min,12,000 rpm (~13,400×g)離心2 min。洗脫液的pH對于洗脫效率有很大影響。若用ddH?O做洗脫液應(yīng)保證其pH值在7.0-8.5范圍內(nèi),pH值低于7.0會降低洗脫效率;且DNA產(chǎn)物應(yīng)保存在-20℃,以防DNA降解。

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